Resumo

A B S T R A C T

The Pluteaceae family is recorded in 10 Brazilian states, containing lignicolous, terricolous and humicolous species that perform fundamental functions as saprobes. This study aimed to contribute to a better understanding of the interactions and ecological importance of the family. For this, through a synthesis of taxonomic, morphological, and molecular data, the phylogenetic relationships of the group were reconstructed by Maximum Likelihood and Maximum Parsimony. Georeferenced data were used to elucidate the distribution of the species in Brazilian biomes. Phylogenetically, the family integrated a monophyletic clade, where the genera Pluteus and Volvariella were internally related as sister clades. In relation to the ecology of Pluteaceae, the Southeastern Region was very important, containing about 32% of the family species occurring near watersheds. 62% of the species of the group have occurrence restricted to the Atlantic Forest biome, and many of them are associated with native arboreal substrates, such as Roupala sp., Dicksonia sp., Clitoria sp., and Astrocaryum aculeatissimum. In general, the largely lignicolous family acts in the ecosystems as nutrient cycles, mainly related to wood. Also, species of the family with colonization in litterfall and terricolous represented unique interactions involving native arboreal groups and occurrences in areas of intense anthropic action, such as agriculture. Thus, with the compiled data in this study, it was possible to infer that Pluteaceae is directly associated with the regeneration of Brazilian biomes, actively helping in their maintenance. 

Keywords: Evolutionary relationships, Ecology of Agaricales, Ecosystems.

 

Diversidade e Associações Ecológicas de Pluteaceae (Fungi, Agaricomycetes, Agaricales) nos Biomas Brasileiros

 

R E S U M O

A família Pluteaceae é registrada em 10 estados brasileiros, contendo espécies lignícolas, terrícolas e húmicas que desempenham papéis fundamentais como sapróbios. Este estudo teve como objetivo contribuir para uma melhor compreensão das interações e da importância ecológica da família. Para tanto, através de uma síntese de dados taxonômicos, morfológicos e moleculares, as relações filogenéticas do grupo foram reconstruídas por Máxima Verossimilhança e Máxima Parcimônia. Os dados georreferenciados foram utilizados para elucidar a distribuição das espécies nos biomas brasileiros. Filogeneticamente, a família integrou um clado monofilético, onde os gêneros Pluteus e Volvariella se relacionaram internamente como clados irmãos. Em relação à ecologia de Pluteaceae, a Região Sudeste foi muito importante, contendo cerca de 32% das espécies da família ocorrendo próximas a bacias hidrográficas. 62% das espécies do grupo possuem ocorrência restrita ao bioma Mata Atlântica, e muitas delas estão associadas a substratos arbóreos nativos, tais como Roupala sp., Dicksonia sp., Clitoria sp. e Astrocaryum aculeatissimum. Em geral, a família é em grande parte lignícola e atua nos ecossistemas como cicladores de nutrientes, principalmente os relacionados à madeira. Além disso, espécies da família de colonização em serapilheira e terrícolas apresentaram interações únicas envolvendo grupos arbóreos nativos, e ocorrências em áreas de intensa ação antrópica como a da agricultura. Assim, com os dados compilados neste estudo, foi possível inferir que Pluteaceae está diretamente associada à regeneração dos biomas brasileiros, auxiliando ativamente na sua manutenção.

 

Palavras-Chaves: Relações evolutivas, Ecologia de Agaricales, Ecossistemas.

Palavras-chave

• Relações evolutivas
• Ecologia de Agaricales
• Ecossistemas.

Referências

• Abrahão, M. C., Pires, R. M., Gugliotta, A. D. M., Gomes, E. P. C., & Bononi, V. L. R. (2019). Wood-decay fungi (Agaricomycetes, Basidiomycota) in three physiognomies in the savannah region in Brazil. Hoehnea, 46(1), 1-11.
• Abrego, N., & Salcedo, I. (2011). How does fungal diversity change based on woody debris type? A case study in Northern Spain. Ekologija, 57(3), 109–119.
• Abreu, L. D., Marino, R. H., Mesquita, J. B., & Ribeiro, G. T. (2022). Degradação da madeira de Eucalyptus sp. por basidiomicetos de podridão branca. Arquivos do Instituto Biológico, 74, 321-328.
• Ainsworth, G. C. (2008). Ainsworth & Bisby's dictionary of the fungi. Cabi.
• Albuquerque, M. P. D., Pereira, A. B., & Carvalho Júnior, A. A. D. (2010). A família Agaricaceae Chevall. em trechos de Mata Atlântica da Reserva Biológica do Tinguá, Nova Iguaçu, Rio de Janeiro, Brasil: Gêneros Agaricus, Cystolepiota e Lepiota. Acta botânica brasílica, 24(1), 497-509.
• Azevedo, E., & Barata, M. (2018). Diversidade no reino Fungi e aplicações à Indústria. Revista de Ciência Elementar, 6(4), 2-7.
• Baker, W. J., & Dransfield, J. (2016). Beyond Genera Palmarum: progress and prospects in palm systematics. Botanical Journal of the Linnean Society, 182(2), 207-233.
• Baldrian, P., Zrůstová, P., Tláskal, V., Davidová, A., Merhautová, V., & Vrška, T. (2016). Fungi associated with decomposing deadwood in a natural beech-dominated forest. Fungal Ecology, 23(1), 109-122.
• Batista, A. C. (1957). Alguns Agaricales saprófitos de Pernambuco. Mycopath. Mycol. Appl. 8(1), 127–134.
• Becker, R. A., Wilks, A. R., Brownrigg, R., & Deckmyn, A. (2016). mapdata: extra map databases. R package version 2.2-6.
• Bononi, V. L. R., Oliveira, A. K. M. D., Quevedo, J. R. D., & Gugliotta, A. D. M. (2008). Fungos macroscópicos do Pantanal do Rio Negro, Mato Grosso do Sul, Brasil. Hoehnea, 35(4), 489-511.
• Borba Silva, M. A., Drechsler Santos, E., & Robledo, G. L. (2015). Community structure and functional diversity of polypores (Basidiomycota) in the Atlantic Forest of Santa Catarina State, Brazil. Biotemas, 28(1), 1-11.
• Brancalion, P. H. S., Rodrigues, R. R., Gandolfi, S., Kageyama, P. Y., Nave, A. G., Gandara, F. B., ... & Tabarelli, M. (2010). Instrumentos legais podem contribuir para a restauração de florestas tropicais biodiversas. Revista Árvore, 34(1), 455-470.
• Brasil. (2006). Instituto Florestal. Plano de Manejo - Parque Estadual da Cantareira. Instituto Florestal. Secretaria de Estado de Meio Ambiente. São Paulo.
• Brasil. (2017). Secretaria de Infraestrutura e Meio Ambiente - Instituto Florestal. Detalhamento da metodologia para execução do Zoneamento Ecológico-Econômico pelos estados Brasileiros. Brasília, DF, Brasil.
• Carrenho, R., Trufem, S. F. B., Bononi, V. L. R., & Silva, E. S. (2007). The effect of different soil properties on arbuscular mycorrhizal colonization of peanuts, sorghum and maize. Acta Botanica Brasilica, 21(3), 723-730.
• Copoț, O. V. I. D. I. U., & Tănase, C. Ă. T. Ă. L. I. N. (2019). Lignicolous fungi ecology-biotic and abiotic interactions in forest ecosystems. Memoirs of the scientific sections of the Romanian academy.
• Costa, J. T. F., da Silva, L. S., Alves, A. R., de Holanda, A. C., Leite, E. M., & Nunes, A. K. A. (2015). Avaliação da serapilheira em área de mata ciliar na bacia do rio Gurguéia sul do Piauí. Revista Verde de Agroecologia e Desenvolvimento Sustentável, 10(1), 13-19.
• da Silva, J. J. N., de Mello, W. Z., Rodrigues, R., Alves, B. J. R., de Souza, P. A., & da Conceição, M. C. G. (2018). Ciclagem de nitrogênio em florestas tropicais e plantações de eucalipto no Brasil no Antropoceno Revista Virtual de Química, 10(6),1792-1808.
• de Mattos, J. L. H. (2020). Bioprospecção de Macrofungos da Classe Basidiomycetes da Floresta Nacional Mário Xavier em Seropédica-RJ. Tese de Doutorado, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ, Brasil.
• de Meijer, A. A. (2006). Preliminary list of the macromycetes from the Brazilian State of Paraná. Bol Mus Bot Municipal, 68, 1-55.
• Dias, R. L., & Cortez, V. G. (2013). New records of Pluteus (Agaricales) from Paraná State, Brazil. Mycosphere, 4(5), 937-943.
• dos Santos, M. V. O., Barbosa, F. R., Argôlo, D. M., Magalhães, E. D. M. N. L., & Bezerra, J. L. (2015). Conidial fungi associated with the leaf litter of plant species in Brazil. Agrotrópica, 27(2), 173-190.
• Drehmel, D., James, T., & Vilgalys, R. (2008). Molecular phylogeny and biodiversity of the boletes. Fungi, 1(4), 17-23.
• Edman, M., & Jonsson, B. G. (2001). Spatial pattern of downed logs and wood‐decaying fungi in an old‐growth Picea abies forest. Journal of Vegetation Science, 12(5), 609-620.
• Fávero, L. P., & Belfiore, P. (2017). Manual de análise de dados: estatística e modelagem multivariada com Excel®, SPSS® e Stata®. Elsevier Brasil.
• Feitosa, R. D. S. M., & Ribeiro, A. S. (2005). Mirmecofauna (Hymenoptera, Formicidae) de serapilheira de uma área de Floresta Atlântica no Parque Estadual da Cantareira–São Paulo, Brasil. Biotemas, 18(2), 51-71.
• Ferisin, G., & Dovana, F. (2016). Pluteus velutinus prima segnalazione in Italia. Micologia & Vegetazione Mediterranea, 31(1), p. 45-52.
• Figueiredo, B. V., dos Santos, M. B., & Fortuna, J. L. (2020). Identificação de macrofungos encontrados em um fragmento de Mata Atlântica no extremo Sul da Bahia. Brazilian Journal of Animal and Environmental Research, 3(4), 3170-3193.
• Floudas, D., Binder, M., Riley, R., Barry, K., Blanchette, R. A., Henrissat, B., ... & Hibbett, D. S. (2012). The Paleozoic origin of enzymatic lignin decomposition reconstructed from 31 fungal genomes. Science, 336(6089), 1715-1719.
• Goloboff, P. A., Farris, J. S., & Nixon, K. C. (2008). TNT, a free program for phylogenetic analysis. Cladistics, 24(5), 774-786.
• Gondim Junior, M. G. C., Barros, R., Silva, F. R. D., & Vasconcelos, G. J. N. D. (2005). Occurence and biological aspects of the Clitoria tree psyllid in Brazil. Scientia Agricola, 62(3), 281-285.
• Guzmán, H. M., & Guevara, C. A. (1998). Arrecifes coralinos de Bocas del Toro, Panamá: II. Distribución, estructura y estado de conservación de los arrecifes de las Islas Bastimentos, Solarte, Carenero y Colón. Revista de Biología Tropical, 46(4), 889-912.
• Hamaguchi, M. M. K., & Vitali, V. M. V. (2014). Contribuição para o conhecimento de fungos basidiomicetos do Parque Estadual das Fontes do Ipiranga e Cantareira. São Paulo, SP, Brasil.
• Hottola, J., & Siitonen, J. (2008). Significance of woodland key habitats for polypore diversity and red-listed species in boreal forests. Biodiversity and Conservation, 17(11), 2559-2577.
• IBGE. (2020). Instituto Brasileiro De Geografia e Estatística (Ibge). Manual Técnico Da Vegetação Brasileira. Rio De Janeiro, RJ, Brasil.
• Ihaka, R., & Gentleman, R. (1996). R: A Language for Data Analysis and Graphics. Journal of Computational and Graphical Statistics 5: 299. doi: 10.2307/1390807.
• IUCN. (2021). The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2021-1.
• James, T. Y., Kauff, F., Schoch, C. L., Matheny, P. B., Hofstetter, V., Cox, C. J., ... & Vilgalys, R. (2006). Reconstructing the early evolution of Fungi using a six-gene phylogeny. Nature, 443(7113), 818-822.
• Junior, S. R. K., Silveira, V. F., Garcia, M. C. F., Apati, G. P., Schneider, A. L. D. S., & Pezzin, A. P. T. (2021). Produção e caracterização de filtros hidrofóbicos de celulose vegetal. Brazilian Journal of Development, 7(3), 21677-21695.
• Justo, A., Vizzini, A., Minnis, A. M., Menolli Jr, N., Capelari, M., Rodríguez, O., ... & Hibbett, D. S. (2011). Phylogeny of the Pluteaceae (Agaricales, Basidiomycota): taxonomy and character evolution. Fungal Biology, 115(1), 1-20.
• Kalinina, B. L., Bolshakov, S. Y., & Bulyonkova, T. M. (2020). New records of Basidiomycetes from the Pskov region in the Polistovskiy State Nature Reserve (Russia). Nature Conservation Research, 5(3), 9-22.
• Kew, R. B. G. (2018). Plants of the world online. Achyranthes bidentata, 58678-1.
• Konta, S. (2020). A new genus Allodiatrype, five new species and a new host record of diatrypaceous fungi from palms (Arecaceae).Mycosphere 11(1): 239–268.
• Large, M. F., & Braggins, J. E. (2004). Tree ferns. CSIRO publishing.
• Leal, G. R., & Gugliotta, A. D. M. (2008). Cryptogams of the" Parque Estadual das Fontes do Ipiranga", São Paulo, SP: fungi, 9: Meripilaceae. Hoehnea, 35(1), 99-110.
• Lonsdale, D., Pautasso, M., & Holdenrieder, O. (2008). Wood-decaying fungi in the forest: conservation needs and management options. European Journal of Forest Research, 127(1), 1-22.
• Maddison, W. P., & Maddison, D. R. (2007). Mesquite: a modular system for evolutionary analysis. Mesquite v. 2.72.
• Maia, L. C., Carvalho Júnior, A. A. D., Cavalcanti, L. D. H., Gugliotta, A. D. M., Drechsler-Santos, E. R., Santiago, A. L. D. A., ... & Silva, V. F. D. (2015). Diversity of Brazilian fungi. Rodriguésia, 66(1), 1033-1045.
• Matheny, P. B., Curtis, J. M., Hofstetter, V., Aime, M. C., Moncalvo, J. M., Ge, Z. W., ... & Hibbett, D. S. (2006). Major clades of Agaricales: a multilocus phylogenetic overview. Mycologia, 98(6), 982-995.
• Medrado, P. H. D. S. (2019). Fungos de solo no controle biológico de fitopatógenos. Curitiba, PR, Brazil.
• Mendoza, A. Y. G., Santana, R., Santos, V., & Lima, R. A. (2018). Diversidade de Basidiomycota na Reserva Natural de Palmari, Amazonas, Brasil. Revista Gestão & Sustentabilidade Ambiental, 7(4), 324-340.
• Menolli Jr, N., Asai, T., & Capelari, M. (2010). Records and new species of Pluteus from Brazil based on morphological and molecular data. Mycology, 1(2), 130-153.
• Menolli Jr, N., de Meijer, A. A., & Capelari, M. (2015). The genus Pluteus (Pluteaceae, Agaricales) from the state of Paraná, Brazil. Nova Hedwigia, 100(1-2), 101-157.
• Menolli Junior, N., & Capelari, M. (2016). Pluteus section Celluloderma (Pluteaceae, Agaricales) in Brazil: additional morphological studies and an annotated checklist of all named taxa. Iheringia Série Botânica, 71(3), 316-330.
• Menolli, N. J. (2013). O gênero Pluteus no Brasil: revisão taxonômica e contribuição a filogenia molecular. Tese de Doutorado, Instituto de Botânica de São Paulo, São Paulo, SP, Brasil.
• Menolli, N. J., & Capelari, M. (2008). Records and two new species of Volvariella (Pluteaceae, Agaricales) from Brazil. Mycotaxon 106(1), 385-398.
• Menolli, N., Justo, A., Arrillaga, P., Pradeep, C. K., Minnis, A. M., & Capelari, M. (2014). Taxonomy and phylogeny of Pluteus glaucotinctus sensu lato (Agaricales, Basidiomycota), a multicontinental species complex. Phytotaxa, 188(2), 78-90.
• Miranda-Melo, A. D. A., Martins, F. R., & Santos, F. A. M. D. (2007). Estrutura populacional de Xylopia aromatica (Lam.) Mart. e de Roupala montana Aubl. em fragmentos de cerrado no Estado de São Paulo. Brazilian Journal of Botany, 30(3), 501-507.
• Mummey, D. L., Clarke, J. T., Cole, C. A., O’Connor, B. G., Gannon, J. E., & Ramsey, P. W. (2010). Spatial analysis reveals differences in soil microbial community interactions between adjacent coniferous forest and clearcut ecosystems. Soil Biology and Biochemistry, 42(7), 1138-1147.
• Nobre, C. P., Ferraz Júnior, A. S. D. L., Goto, B. T., Berbara, R. L. L., & Noqueira, M. D. C. (2010). Arbuscular mycorrhizal fungi in an alley cropping system in the state of Maranhão, Brazil. Acta Amazonica, 40(4), 641-646.
• Oliveira, S. A. B. D., Barbosa, F. R., Andrade, E. A., Ferrarini, S. R., & Bonaldo, S. M. (2019). Compostos voláteis de fungos conidiais sapróbios da Amazônia Meridional no controle in vitro de fitopatógenos. Summa Phytopathologica, 45(1), 302-307.
• Oliveira, S. F., Neto, J. P. M., & Silva, K. E. R. (2018). Uma revisão sobre a morfoanatomia e as propriedades farmacológicas das espécies Astrocaryum aculeatum Meyer e Astrocaryum vulgare Mart. Scientia Amazonia, 7(3), 18-28.
• Pegler, D. N. (1977). A preliminary agaric flora of East Africa. Her Majesty's Stationery Office.
• Pradeep, C. K., Justo, A., Vrinda, K. B., & Shibu, V. P. (2012). Two new species of Pluteus (Pluteaceae, Agaricales) from India and additional observations on Pluteus chrysaegis. Mycological Progress, 11(4), 869-878.
• Putzke, J. (1994). Lista de fungos Agaricales (Hymenomycetes, Basidiomycotina) referidos para o Brasil. Caderno de Pesquisa, sér. Bot. 6(2), 1-189.
• Putzke, J., & Putzke, M. (2017). Cogumelos-Fungos Agaricales no Brasil. Vol. I. São Gabriel: Editora JP.
• Putzke, J., & Putzke, M. (2018). Cogumelos-Fungos Agaricales no Brasil. Vol. II. São Gabriel: Editora JP.
• Putzke, J., & Wartchow, F. (2008). Lista de espécies de Pluteaceae (Agaricales) que ocorrem no Brasil. Biociências, 16(2), 110-113.
• Raithelhuber, J. (1991). Flora mycologica argentina: Hongos III. Stuttgart: Mycosur.
• Ray, P., Tiwari, R., Reddy, U. G., & Adholeya, A. (2005). Detecting the heavy metal tolerance level in ectomycorrhizal fungi in vitro. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 21(3), 309-315.
• Revell, L. J. (2012). Bioinformatics-dendextend-an R package for visualizing, adjusting and comapring trees of hierachical clutering. Methods Ecol. Evol, 3(1), 217-223.
• Richterich, P. (2004). CodonCode Aligner Version 1.2 Released. Genet Med, 6(1), 162-163.
• Rosa, L. H., & Capelari, M. (2009). Agaricales fungi from Atlantic rain forest fragments in Minas Gerais, Brazil. Brazilian Journal of Microbiology, 40(4), 846-851.
• Rosa, L. H., Machado, K. M. G., Jacob, C. C., Capelari, M., Rosa, C. A., & Zani, C. L. (2003). Screening of Brazilian basidiomycetes for antimicrobial activity. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz, 98(7), 967-974.
• Santana, M. V., Andrade, J. P., Monteiro, J. S., Gusmão, L. F. P., & Bezerra, J. L. (2017). Microfungos associados à serapilheira na Mata Atlântica e Caatinga, Bahia, Brasil. Revista Brasileira de Biociências, 15(3), 135-142.
• Sariyildiz, T. (2015). Effects of tree species and topography on fine and small root decomposition rates of three common tree species (Alnus glutinosa, Picea orientalis and Pinus sylvestris) in Turkey. Forest Ecology and Management, 335(1), 71-86.
• Scherer Neto, P., & Bispo, A. A. (2011). Avifauna do Parque Estadual de Vila Rica do Espírito Santo, Fênix, Paraná. Biota Neotropica, 11(3), 317-329.
• Silvestro, D., & Michalak, I. (2012). raxmlGUI: a graphical front-end for RAxML. Organisms Diversity & Evolution, 12(4), 335–337.
• Singer, R. (1958). Monographs of South American Basidiomycetes, especially those of the east slope of the Andes and Brazil. I. The genus Pluteus in South America. Lloydia 21(4), 195-302.
• Singer, R. (1961). Type studies in Basidiomycetes. X. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 2(1), 1-62.
• Singer, R. (1986). The Agaricales in Modern Taxonomy. (4a ed). Koenigstein: Koeltz Scientific Books.
• Sobestiansky, G. (2005). Contribution to a macromycete survey of the States of Rio Grande do Sul and Santa Catarina in Brazil. Brazilian Archives of Biology and technology, 48(3), 437-457.
• Stamatakis, A., Hoover, P., & Rougemont, J. (2008). A rapid bootstrap algorithm for the RAxML web servers. Systematic biology, 57(5), 758-771.
• Stijve, T., & de Meijer, A. (1993). Macromycetes from the State of Paraná, Brazil. 4. The psychoactive species. Arquivos de Biologia e Tecnologia, 36(2), 313-329.
• Tanus, M. R., Pastore, M., Bianchini, R. S., & Gomes, E. P. C. (2012). Estrutura e composição de um trecho de mata atlântica no Parque Estadual das Fontes do Ipiranga, São Paulo, SP, Brasil. Hoehnea, 39(1), 157-168.
• Tedersoo, L., Bahram, M., Põlme, S., Kõljalg, U., Yorou, N. S., Wijesundera, R., ... & Abarenkov, K. (2014). Global diversity and geography of soil fungi. Science, 346(6213), 1256688.
• Vaidya, G., Lohman, D. J., & Meier, R. (2011). SequenceMatrix: concatenation software for the fast assembly of multi‐gene datasets with character set and codon information. Cladistics, 27(2), 171-180.
• Vanderwal, A., Gunnewiek, P. K., de Hollander, M., & de Boer, W. (2017). Fungal diversity and potential tree pathogens in decaying logs and stumps. Forest Ecology and Management, 406, 266-273.
• Van-Tichelen, K. K., Colpaert, J. V., & Vangronsveld, J. (2001). Ectomycorrhizal protection of Pinus sylvestris against copper toxicity. New Phytologist, 150(1), 203-213.
• Vasquez, A. G., Nogueira, A. S., Kirchner, F. F., & Berger, R. (2007). Uma síntese da contribuição do gênero Pinus para o desenvolvimento sustentável no sul do Brasil. Floresta, 37(3), 445-450.
• Veasey, E. A., Piotto, F. A., Nascimento, W. F. D., Rodrigues, J. F., Mezette, T. F., Borges, A., ... & Mistro, J. C. (2011). Processos evolutivos e a origem das plantas cultivadas. Ciência Rural, 41(7), 1218-1228.
• Walkenbach, J. (2010). Excel 2010 bible (Vol. 593). John Wiley & Sons.
• Walthert, L., & Meier, E. S. (2017). Tree species distribution in temperate forests is more influenced by soil than by climate. Ecology and Evolution, 7(22), 9473-9484.
• Wartchow, F. (2009). Volvariella cubensis: a rare neotropical agaric new to South America. Mycotaxon, 107(1), 181-187.
• Wartchow, F. (2018). Una nueva especie de Pluteus, sección Celluloderma (Agaricales, Basidiomycota) del sur de Brasil. Lilloa, 55(2), 75–79.
• Wartchow, F., Cortez, V. G., & Coelho, G. (2006). New records of Pluteus (Pluteaceae, Agaricales) from Brazil. Mycotaxon, 96(1), 241-252.
• Wartchow, F., Cortez, V. G., & Coelho, G. (2006). New records of Pluteus (Pluteaceae, Agaricales) from Brazil. Mycotaxon, 96(1), 241-252.
• Xavier, L. V., & de Holanda, C. L. (2015). Ecology of lignicolous myxomycetes in Brazilian Atlantic rain forest. Mycological Progress, 14(10), 1-9.
• Xavier-Santos, S., Carvalho, C. C., Bonfá, M., Silva, R., Capelari, M., & Gomes, E. (2004). Screening for pectinolytic activity of wood-rotting basidiomycetes and characterization of the enzymes. Folia microbiologica, 49(1), 46-52.

Informações do artigo